新闻分类
--没有发布新闻发类--
联系方式
联系人:蔡盼
电话:021-61998208
传真:021-61998551
邮箱:shklbio@163.com
地址:上海市闵行区闵北路88弄1-30号第22栋BV145室

miR-301b-3p对M-CSF诱导单核细胞自噬的调控{康朗生物文献}

发布时间:2018-06-06

miR-301b-3p对M-CSF诱导单核细胞自噬的调控


沈健

第二军医大学

一、背景与目的动脉粥样硬化被认为有炎症因素参与其病理过程,而其炎症过程与单核细胞和单核细胞来源巨噬细胞的招募、活化以及单核细胞的分化相关,且与动脉粥样硬化斑块稳定性及动脉粥样硬化性疾病的预后相关。然而,由于单核细胞半衰期较短,如果缺少自噬,循环血中的单核细胞将会自然凋亡。目前已知主要的可诱导单核细胞自噬的刺激物主要有粒细胞巨噬细胞刺激因子(GM-CSF)和巨噬细胞刺激因子(M-CSF)。目前认为自噬是一个普遍存在于真核细胞中、可通过双层膜结构的囊泡降解或回收不需要或无功能的细胞组分以维持细胞稳态、抗衰老以及细胞发育的过程。其过程中,微管相关蛋白轻链3 (LC3)以及泛素样结合蛋白p62/SQSTM1均为重要标志蛋白,故常作为检测自噬活性的常用指标之一。短链非编码RNA中微小核糖核酸(microRNA, miRNA, miR-)可对广泛细胞各种生物学活动进行转录后调控。故我们设计本研究旨在探讨miRNA在单核细胞自噬中的表达情况及其调控作用。我们通过将THP-1人单核细胞置于M-CSF刺激环境下,诱导单核细胞发生自噬,检测miRNA表达情况,筛查表达变化最为显著的miRNA,并进一步将其在单核细胞中过表达来观察细胞自噬活性的变化。进而探讨该miRNA调控M-CSF诱导的THP-1人单核细胞自噬的潜在靶基因。二、研究方法(一)THP-1人单核细胞的培养THP-1人单核细胞培养条件为完全1640培养基(90%RPMI-1640+10%胎牛血清+1%P/S)。诱导自噬条件为在完全1640培养液中加入M-CSF至100ng/ml。(二)流式细胞检测THP-1人单核细胞按上述方法培养,CYTO-ID自噬检测试剂盒中绿色染剂染色后用流式细胞仪的绿(FL1)通道分析样本。(三)蛋白免疫印迹(Western blot)单核细胞样品采用HelixGenRIPA裂解液提取蛋白,对LC3-Ⅰ、LC3-Ⅱ、p62/SQSTMI以及GAPDH等蛋白表达情况进行检测。一抗浓度如下:anti-LC3(1:1000)、anti-p62 (1:1000)、anti-GAPDH (1:1000)。二抗浓度如下:anti-rabbit(1:10000)、anti-mouse (1:5000)。蛋白条带应用 BIORADFlour-SMuiltilmager 成像系统检测。(四)透射电子显微镜单核细胞经M-CSF处理后使用多聚甲醛固定液4℃固定6h以上后送检,电镜下观察到双层膜结构囊泡状的自噬体作为自噬定性检测标准。(五)Agilent miRNA 芯片应用mirVana RNA提取试剂盒提取total RNA,芯片杂交后应用Aglient G2505C扫描仪中选择相应的参数扫描。(六)实时定量聚合酶链反应(qRT-PCR)应用miRcute miRNA提取分离试剂盒提取THP-1人单核细胞的miRNA,应用miRcute增强型miRNAcDNA第一链合成试剂盒进行反转录,miRcute增强型miRNA荧光定量检测试剂盒进行qRT-PCR,使用Roche LightCycler分析仪进行检测分析,以U6作为内参计算ACt值,以2-△△Ct法计算目标miRNA相对表达水平。(七)腺病毒构建及细胞转染构建重组腺病毒并扩增、测定滴度,继而通过腺病毒将miR-301b-3p转染入单核细胞。采用qRT-PCR方法检测转染效率。(八)双荧光素酶报告基因分别将MYB和CYLD的mRNA 3’UTR融合至荧光素酶质粒中,再将质粒分别与miR-301b-3p类似物共转染至293T细胞中,24 h后裂解细胞,应用双荧光素酶报告系统试剂盒测定荧光素酶活性并定量分析。(九)统计学分析计量资料以平均数±标准差表示,每组的实验数据重复至少3次。两组间比较采用两独立样本的t检验,多个组间比较采用单因素ANOVA分析。以P<0.05作为显著性差异标准。三、结果(一)M-CSF诱导THP-1人单核细胞自噬M-CSF诱导处理后,应用CYTO-ID自噬检测试剂盒对THP-1人单核细胞进行流式细胞检测显示处理6 h时细胞自噬水平显著升高;Western blot显示LC3II/1比值显著高于对照组、p62/SQSTM1显著低于对照组,应用巴弗洛霉素A1抑制溶酶体活性后,相同处理条件下LC3Ⅱ/Ⅰ比值进一步增高、p62/SQSTM1则高于对照组;透射电子显微镜观察到M-CSF处理6 h时单核细胞内形成双侧膜结构自噬体,而对照组则未观察到该现象。上述结果均证实在M-CSF处理6 h后单核细胞自噬被显著激活。(二)miRNA表达情况Agilent miRNA芯片检测结果提示与对照组相比,M-CSF处理6 h时单核细胞表达 miRNA 中 miR-1249-3p、miR-301b-3p、miR-4653-3p、miR-513a-5p、miR-6734-5p存在显著差异,进一步应用qRT-PCR检测验证miR-301b-3p表达显著增高。(三)过表达miR-301b-3p促进M-CSF诱导的单核细胞自噬用miR-301b-3p转染单核细胞,48 h时qRT-PCR检测显示miR-301b-3p表达量与对照组相比显著增高,提示转染有效。M-CSF诱导单核细胞发生自噬,继而应用Western blot检测显示miR-301b-3p过表达后LC311/I1比值显著增高、p62/SQSTM1显著降低,提示过表达miR-301b-3p进一步促进M-CSF诱导的单核细胞自噬。(四)靶基因预测及验证应用TargetScan、microRNAorg等数据库检索预测筛选显示MYB、CYLD可能为miR-301b-3p的潜在靶基因,其3’UTR含有miR-301b-3p可能的结合位点且保守性较好,故本研究应用荧光素酶报告基因方法验证MYB与CYLD是否为miR-301b-3p的靶基因。结果显示过表达miR-301b-3p可显著抑制MYB-3’UTR与CYLD-3’URT的荧光素酶表达,提示MYB与CYLD为miR-301b-3p的直接靶基因。四、结论(一)M-CSF能够诱导THP-1人单核细胞发生自噬,在诱导6 h后自噬活性水平显著增高。(二)在M-CSF能够诱导THP-1人单核细胞自噬时,miR-301b-3p表达显著增高。(三)过表达miR-301b-3p能促进M-CSF诱导的单核细胞自噬。(四)miR-301b-3p靶向作用于MYB与CYLD,可能通过该途径实现促进M-CSF诱导的单核细胞自噬。 还原

微小核糖核酸; 单核细胞; 自噬; 巨噬细胞刺激因子;

赵仙先;

R543.5



(与0h组

图2-5miR-3



联系方式
手机:18217752821
Q Q:
微信扫一扫